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QuantStudio™ 3实时荧光定量PCR系统的标准操作流程。请注意,本指南为通用操作流程,在进行任何实验前,请务必详细阅读仪器和试剂的使用说明书,并严格遵守您所在实验室的安全规范。
一、赛默飞QuantStudio 3 qPCR系统标准操作流程
仪器操作与运行程序
1、启动软件:
双击桌面上的“QuantStudio™ Design & Analysis Software"图标启动软件。
2、创建新实验:
点击 “New Experiment" 或 “Create New"。
实验类型: 选择 “Quantitation (标准曲线定量)", “Comparative Ct (ΔΔCt法)", “Melt Curve (熔解曲线)" 等,根据您的实验目的选择。
检测化学物质: 选择 “SYBR Green" 或 “TaqMan Probe"。
模板选择: 可以选择空白模板或从已有实验导入板布局。
3、设置板布局:
在软件界面显示的虚拟96孔板上,用鼠标选中孔位。
在右侧属性栏中,为每个孔或一组孔定义:
Sample Name(样品名称): 如 Sample1, Control 等。
Task(任务): Unknown(未知样品), Standard(标准品), NTC(无模板对照)等。
Reporter(荧光染料): 通常是FAM(SYBR Green或TaqMan探针),如果您使用多通道检测,还需选择其他染料如VIC, ROX等。
Quencher(淬灭基团): 软件通常会自动匹配,如MGB/NBQ。
Quantity(浓度): 仅对标准品(Standard)需要输入已知浓度,用于制作标准曲线。
4、编辑运行程序:
点击 “Assign Targets & Samples" 后,进入 “Run Method" 界面。
点击 “Edit" 编辑热循环程序。一个典型的qPCR程序包含以下步骤:
阶段1:预变性/UNG酶孵育(可选)
目的:激活热启动酶,或使用UNG酶防止残留污染。
条件:50°C for 2 min (UNG酶作用), 95°C for 2-10 min(酶激活)。
阶段2:PCR循环(40-45个循环)
变性: 95°C for 5-15 seconds。
退火/延伸: 60°C for 30-60 seconds(在此步骤采集荧光信号)。
注意: 退火温度和时间需根据您的引物和预混液说明书进行优化。对于SYBR Green法,通常在退火/延伸结束时采集信号。
阶段3:熔解曲线分析(SYBR Green法)
目的:确认扩增产物的特异性。
条件:95°C for 15 seconds -> 60°C for 1 min -> 缓慢升温至95°C(例如,每升高0.3°C采集一次荧光信号)。
5、运行实验:
程序设置完成后,点击 “Start Run" 或 “Run"。
软件会提示您放置反应板。打开仪器机盖,将反应板放入样品槽,确保板子方向正确(A1孔在左上角),然后关闭机盖。
在弹出窗口中确认板子位置,点击 “OK" 开始运行。
软件会实时显示扩增曲线和反应进度。
二、赛默飞QuantStudio3实时荧光定量PCR数据分析与关机
1、数据分析:
运行结束后,软件会自动跳转到分析界面。
设置基线阈值和Ct值: 软件通常会自动设置,但您可能需要手动调整基线范围(Baseline)和阈值线(Threshold),以确保所有扩增曲线的Ct值计算准确。
查看结果: 软件会给出每个孔的Ct值。您可以根据实验类型查看结果:
标准曲线法: 软件会生成标准曲线,并自动计算未知样品的拷贝数。
ΔΔCt法: 软件可帮助计算相对于内参基因和对照组的基因表达相对倍数。
熔解曲线: 查看熔解峰是否为单一尖锐峰,以确认扩增特异性。
导出数据: 可以将结果导出为Excel或CSV格式进行进一步处理。
2、关机:
数据分析完成后,保存实验文件。
退出QuantStudio软件。
关闭电脑。
通常情况下,QuantStudio 3主机无需关闭电源,以保持内部温度稳定并利于光学元件的保养。如果长期不用(如超过一周),可关闭主机背后电源开关。
清理实验台面,妥善处理生物废弃物。
三、重要注意事项与日常维护
1、避免污染: qPCR极其敏感。配制反应液和加模板的区域应分开,勤换手套,使用带滤芯的枪头。
2、反应体系均一性: 确保反应液混合均匀,避免产生气泡,气泡会影响荧光信号的读取。
3、程序优化: 使用的引物应进行退火温度梯度实验和引物浓度优化。
4、仪器维护: 定期用柔软的湿布清洁仪器表面和样品槽。如果发现信号异常,可运行仪器自带的光学校准程序(在软件工具菜单中)。
5、ROX参比染料: 某些预混液需要添加ROX染料作为内参校正孔间误差,请根据您的预混液说明书决定是否需要在程序设置中选择“ROX"作为被动参比染料。